[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
وبگاه های نمایه کننده::
اسامی داوران::
مبانی اخلاقی نشریه::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
شماره شاپا
1680-7154
..
ناشر
انجمن علوم باغبانی
..
پیوندهای مفید

انجمن علوم باغبانی ایران
..
آمارهای نشریه
مقالات منتشر شده: 325
نرخ پذیرش: 65.8
نرخ رد: 34.2
میانگین داوری: 265 روز
میانگین انتشار: 244 روز
..
:: جلد 23، شماره 3 - ( پاییز 1401 ) ::
جلد 23 شماره 3 صفحات 462-447 برگشت به فهرست نسخه ها
ارزیابی تاثیر طیف‌های نوری (LED) و نانو ذرات TiO2 و ZnO بر رویان‌‌‌زایی رویشی و باززایی برخی اکوتیپ‌‌های زنیان
نرگس مرادی ، سید احمد سادات نوری ، یاسین دومانی ، فاطمه امینی
دانشگاه تهران
چکیده:   (486 مشاهده)
گیاه زنیان با نام علمی  Trachyspermum ammi L. از تیره چتریان است. با استفاده از فن‌ کشت بافت گیاهی، می‌‌توان تنوع ژنتیکی گیاهان را در یک محیط کنترل‌‌شده حفظ کرد. هدف از مطالعه حاضر، بررسی اثر غلظت‌های نانوذرات ZnO و TiO2 و کیفیت نور‌های مختلف روی رویان‌‌زایی رویشی و باززایی بود. آزمایش حاضر به‌‌صورت فاکتوریل (فاکتورها شامل اکوتیپ، نانوذرات، طیف نوری) بر پایه طرح به‌طورکامل تصادفی در 3 تکرار انجام گرفت. پس از افزودن دی ‌اکسید تیتانیوم (TiO2) و اکسید روی (ZnO) به محیط کشت MS، ریزنمونه‌ها در طیف‌‌های نوری قرمز، آبی و ترکیب آبی و قرمز قرار گرفتند. در این مطالعه با به‌‌کارگیری نانوذرات درصد آلودگی قارچی و باکتریایی نسبت به تیمار شاهد کاهش یافت. با افزایش غظت نانوذره TiO2 تحت تیمار طیف ترکیب آبی و قرمز درصد آلودگی به صفر رسید. همچنین بالاترین القای پینه‌، رویان‌ رویشی و باززایی برای نانوذره TiO2 تحت تیمار طیف ترکیبی آبی و قرمز در اکوتیپ شیراز و اردبیل مشاهده شد. طیف نور آبی بیشترین تاثیر را در جذب و کنترل آلودگی برای نانوذرهZnO  داشت. با افزایش شدت نور جذب نانوذره ZnO کاهش و آلودگی افزایش یافت. در محیط کشت TiO2 با غلظت 10 میلی‌گرم بر لیتر تحت تیمار ترکیب نور آبی و قرمز فعالیت یاخته‌‌های رویان‌‌زا افزایش یافت. با افزایش نانوذره و شدت نور بالا، فعالیت رادیکال‌های آزاد و آنزیم پلی فنول اکسیداز متوقف شده و جذب ماده‌های غذایی توسط یاخته‌‌های در حال رشد افزایش یافت. در تیمار شاهد گیاهان باززایی شده به توده سفید رنگی تبدیل و در نهایت باعث مرگ پینه‌ القا یافته، رویان‌‌زا و گیاهچه‌های باززا می‌شود. مطالعه حاضر با به‌کارگیری نانوذرات TiO2 و ZnO موفق به ارایه یک پروتکل موثر و مفید برای القای رویان‌ رویشی و باززایی در کمترین زمان در محیط کشت شد.
واژه‌های کلیدی: آنزیم پلی‌فنول اکسیداز، القای پینه‌، رادیکال‌های آزاد، نانوذرات، طیف‌های نوری
متن کامل [PDF 912 kb]   (122 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: بیوتکنولوژی و کشت بافت
دریافت: 1399/10/24 | پذیرش: 1400/10/1 | انتشار: 1401/9/16
فهرست منابع
1. Abdel Wahab, D., N. Othman. and A. Hamada. 2020. Zinc Oxide Nanoparticles Induce Changes in the Antioxidant Systems and Macromolecules in the Solanum nigrum Callus. J. Bot. 60(2): 503-517.
2. Allington, G.R.H., and T.J. Valone. 2010. Reversal of desertification: the role of physical and chemical soil properties. J. Arid Environ. 74(8): 973-977. [DOI:10.1016/j.jaridenv.2009.12.005]
3. Alvarez, S.P., M.A.M. Tapia., M.E.G. Vega, E.F.H. Ardisana, J.A. C.Medina, G.L. F.Zamora. and D.V. Bustamante. 2019. Nanotechnology and Plant Tissue Culture. In Plant Nanobionics. Springer International Publishing, Cham, Switzerland. pp.333-370. [DOI:10.1007/978-3-030-12496-0_12]
4. Chakroun, A., A. Jemmali, K.B. Hamed, C. Abdelli, and P. Druart. 2007. Effet du nitrate d'ammonium sur le développement et l'activité des enzymes anti-oxydantes du fraisier (Fragaria x ananassa L.) micropropagé. Biotech. Agron. Soc. Environ. 11 (2): 89-95
5. Chandana, B.C., H.C.Kumari Nagaveni, M.S. Heena, S.K. Shashikala. and D. Lakshmana.2018. Role of plant tissue culture in micropropagation, secondary metabolites production and conservation of some endangered medicinal crops. J. Pharm. 7(3): 246-251.
6. Chutipaijit, S., and T. Sutjaritvorakul. 2018. Titanium Dioxide (TiO2) nanoparticles induced callus induction and plant regeneration of indica rice cultivars (Suphanburi1 and Suphanburi90). J. Nanomater Bios. 13(4):1003-1010.
7. Dumani, Y., S.M.M., Mortazavian, A. Izadi-Darbandi, H. Ramshini., and M. Bahmankar. 2020. The Study of effective factors in callus induction, somatic vegetative and regeneration in Paulownia ShanTong. J. For. Res. 6(2): 347-366. (In Persion)
8. Dumani, Y., S.M.M. Mortazavian, A. Izadi-Darbandi, H. Ramshini., and F. Amini. 2022. Titanium dioxide nanoparticles affect somatic embryo initiation, development, and biochemical composition in Paulownia sp Seedlings. J. Ind. Crops Prod. 176 : 1-14 [DOI:10.1016/j.indcrop.2021.114398]
9. Ewais, E.A., S.A. Desouky, and E.H. 0Elshazly. 2015. Evaluation of callus responses of Solanum nigrum L. exposed to biologically synthesized silver nanoparticles. J. Nanosci Nanotechnol. 5 (3): 45-56.
10. Fazeli-nasab, B., and Z. Fooladvand. 2016. A review on Iranian Carum copticum L. Composition and biological activities. J. Med. Plants. 12(1):1-8. [DOI:10.9734/EJMP/2016/17584]
11. Jain, S.M., and P.K. Gupta (Eds.). 2018. Step wise protocols for somatic embryogenesis of important woody plants. Springer: Cham, Switzerland. pp. 25-38. [DOI:10.1007/978-3-319-89483-6]
12. Kasemets, K., A. Ivask, H.C. Dubourguier, and A. Kahru. 2009. Toxicity of nanoparticles of ZnO, CuO and TiO2 to yeast Saccharomyces cerevisiae. J.Toxicol In Vitro. 23(6): 1116-1122. [DOI:10.1016/j.tiv.2009.05.015]
13. Kouhi, S.M.M., M. Lahouti, A. Ganjeali, and M.H. Entezari. 2015. Comparative effects of ZnO nanoparticles, ZnO bulk particles, and Zn 2+ on Brassica napus after long-term exposure: changes in growth, biochemical compounds, antioxidant enzyme activities, and Zn bioaccumulation. J. Water Air Soil Pollut. 226(11): 364-375. [DOI:10.1007/s11270-015-2628-7]
14. Kumar, K.R., K.P. Singh, D.V.S. Raju, R. Bhatia, and S. Panwar. 2020. Maternal haploid induction in African marigold (Tagetes erecta L.) through in vitro culture of un-fertilized ovules. Plant Cell Tissue Organ Cul. 143(3):549-564. [DOI:10.1007/s11240-020-01940-0]
15. Lei, Z., S. Mingyu, W. Xiao, L. Chao, Q. Chunxiang, C. Liang, and Fashui, H. 2008. Antioxidant stress is promoted by nano-anatase in spinach chloroplasts under UV-B radiation. J. Biol Trace Elem Res. 121(1): 69-79. [DOI:10.1007/s12011-007-8028-0]
16. Lei, Z., M.Y. Su, X. Wu, C. Liu, C.X. Qu, L. Chen, and H. FS. 2008. Interactions between manufactured nanomaterials and plants. J. Biol. Trace Elem. Res. 121: 69-79.
17. Mahendran, D., P. B. Kavi Kishor, N. Geetha, and P. Venkatachalam. 2018. Phycomolecule-coated silver nanoparticles and seaweed extracts induced high-frequency somatic embryogenesis and plant regeneration from Gloriosa superba L. J. Appl. Psychol. 30(2): 1425-1436. [DOI:10.1007/s10811-017-1293-1]
18. Mandeh, M., M. Omidi, M. Rahaie. 2012. In Vitro Influences of TiO2 Nanoparticles on Barley (Hordeum vulgare L.) Tissue Culture. J. Biol. Trace Elem. Res. 150: 376-380. [DOI:10.1007/s12011-012-9480-z]
19. Moore, M. N. 2006. Environmental risk management-The state of the art. J. Environ. 32(8): 967-976. [DOI:10.1016/j.envint.2006.06.014]
20. Nair, R., S.H. Varghese, B.G. Nair, T. Maekawa, Y. Yoshida, and D.S. Kumar. 2010. Nanoparticulate material delivery to plants. J. Plant Sci. 179(3): 154-163. [DOI:10.1016/j.plantsci.2010.04.012]
21. Sharma K.S. Dubey. 2011.Biotechnology and conservation of medicinal plants. J. Expl Sci 2:60-61
22. Soltani Howyzeh, M., S.A. Sadat Noori, J. V., Shariati, and M. Niazian. 2018. Essential oil chemotype of Iranian Ajowan (Trachyspermum ammi L.). J. Essen. Oil Bear. Plants. 21(1): 273-276. [DOI:10.1080/0972060X.2018.1433074]
23. Valizadeh, M., A., Safarnezhad, Nematzadeh, G.A., Kazemi, T.S. and H. Hamidi. 2008. Regeneration of Plantlets from Fragmented Embryo Explant of Parsi Zira (Bunium persicum Boiss). J..Seed Plant. 24(3): 389-397. (In Persion)
24. Wang, C., S.S. Li, and G.Z. Han. 2016. Commentary: plant auxin biosynthesis did not originate in charophytes. Front. J. Plant Sci. 7:158-165 [DOI:10.3389/fpls.2016.00158]
25. Yang, F., F. Hong, W. You, C. Liu, F. Gao, C. Wu, and P. Yang. 2006. Influence of nano-anatase TiO 2 on the nitrogen metabolism of growing spinach. J. Biol. Trace Elem. Res. 110(2): 179-190. [DOI:10.1385/BTER:110:2:179]
26. Zare, E., S. Pourseyedi. M. Khatami. and E. Darezereshki. 2017. Simple biosynthesis of zinc oxide nanoparticles using nature's source, and it's in vitro bio-activity. J. Mol. Struct. 1146: 96-103. [DOI:10.1016/j.molstruc.2017.05.118]
27. Abdel Wahab, D., N. Othman. and A. Hamada. 2020. Zinc Oxide Nanoparticles Induce Changes in the Antioxidant Systems and Macromolecules in the Solanum nigrum Callus. J. Bot. 60(2): 503-517.
28. Allington, G.R.H., and T.J. Valone. 2010. Reversal of desertification: the role of physical and chemical soil properties. J. Arid Environ. 74(8): 973-977. [DOI:10.1016/j.jaridenv.2009.12.005]
29. Alvarez, S.P., M.A.M. Tapia., M.E.G. Vega, E.F.H. Ardisana, J.A. C.Medina, G.L. F.Zamora. and D.V. Bustamante. 2019. Nanotechnology and Plant Tissue Culture. In Plant Nanobionics. Springer International Publishing, Cham, Switzerland. pp.333-370. [DOI:10.1007/978-3-030-12496-0_12]
30. Chakroun, A., A. Jemmali, K.B. Hamed, C. Abdelli, and P. Druart. 2007. Effet du nitrate d'ammonium sur le développement et l'activité des enzymes anti-oxydantes du fraisier (Fragaria x ananassa L.) micropropagé. Biotech. Agron. Soc. Environ. 11 (2): 89-95
31. Chandana, B.C., H.C.Kumari Nagaveni, M.S. Heena, S.K. Shashikala. and D. Lakshmana.2018. Role of plant tissue culture in micropropagation, secondary metabolites production and conservation of some endangered medicinal crops. J. Pharm. 7(3): 246-251.
32. Chutipaijit, S., and T. Sutjaritvorakul. 2018. Titanium Dioxide (TiO2) nanoparticles induced callus induction and plant regeneration of indica rice cultivars (Suphanburi1 and Suphanburi90). J. Nanomater Bios. 13(4):1003-1010.
33. Dumani, Y., S.M.M., Mortazavian, A. Izadi-Darbandi, H. Ramshini., and M. Bahmankar. 2020. The Study of effective factors in callus induction, somatic vegetative and regeneration in Paulownia ShanTong. J. For. Res. 6(2): 347-366. (In Persion)
34. Dumani, Y., S.M.M. Mortazavian, A. Izadi-Darbandi, H. Ramshini., and F. Amini. 2022. Titanium dioxide nanoparticles affect somatic embryo initiation, development, and biochemical composition in Paulownia sp Seedlings. J. Ind. Crops Prod. 176 : 1-14 [DOI:10.1016/j.indcrop.2021.114398]
35. Ewais, E.A., S.A. Desouky, and E.H. 0Elshazly. 2015. Evaluation of callus responses of Solanum nigrum L. exposed to biologically synthesized silver nanoparticles. J. Nanosci Nanotechnol. 5 (3): 45-56.
36. Fazeli-nasab, B., and Z. Fooladvand. 2016. A review on Iranian Carum copticum L. Composition and biological activities. J. Med. Plants. 12(1):1-8. [DOI:10.9734/EJMP/2016/17584]
37. Jain, S.M., and P.K. Gupta (Eds.). 2018. Step wise protocols for somatic embryogenesis of important woody plants. Springer: Cham, Switzerland. pp. 25-38. [DOI:10.1007/978-3-319-89483-6]
38. Kasemets, K., A. Ivask, H.C. Dubourguier, and A. Kahru. 2009. Toxicity of nanoparticles of ZnO, CuO and TiO2 to yeast Saccharomyces cerevisiae. J.Toxicol In Vitro. 23(6): 1116-1122. [DOI:10.1016/j.tiv.2009.05.015]
39. Kouhi, S.M.M., M. Lahouti, A. Ganjeali, and M.H. Entezari. 2015. Comparative effects of ZnO nanoparticles, ZnO bulk particles, and Zn 2+ on Brassica napus after long-term exposure: changes in growth, biochemical compounds, antioxidant enzyme activities, and Zn bioaccumulation. J. Water Air Soil Pollut. 226(11): 364-375. [DOI:10.1007/s11270-015-2628-7]
40. Kumar, K.R., K.P. Singh, D.V.S. Raju, R. Bhatia, and S. Panwar. 2020. Maternal haploid induction in African marigold (Tagetes erecta L.) through in vitro culture of un-fertilized ovules. Plant Cell Tissue Organ Cul. 143(3):549-564. [DOI:10.1007/s11240-020-01940-0]
41. Lei, Z., S. Mingyu, W. Xiao, L. Chao, Q. Chunxiang, C. Liang, and Fashui, H. 2008. Antioxidant stress is promoted by nano-anatase in spinach chloroplasts under UV-B radiation. J. Biol Trace Elem Res. 121(1): 69-79. [DOI:10.1007/s12011-007-8028-0]
42. Lei, Z., M.Y. Su, X. Wu, C. Liu, C.X. Qu, L. Chen, and H. FS. 2008. Interactions between manufactured nanomaterials and plants. J. Biol. Trace Elem. Res. 121: 69-79.
43. Mahendran, D., P. B. Kavi Kishor, N. Geetha, and P. Venkatachalam. 2018. Phycomolecule-coated silver nanoparticles and seaweed extracts induced high-frequency somatic embryogenesis and plant regeneration from Gloriosa superba L. J. Appl. Psychol. 30(2): 1425-1436. [DOI:10.1007/s10811-017-1293-1]
44. Mandeh, M., M. Omidi, M. Rahaie. 2012. In Vitro Influences of TiO2 Nanoparticles on Barley (Hordeum vulgare L.) Tissue Culture. J. Biol. Trace Elem. Res. 150: 376-380. [DOI:10.1007/s12011-012-9480-z]
45. Moore, M. N. 2006. Environmental risk management-The state of the art. J. Environ. 32(8): 967-976. [DOI:10.1016/j.envint.2006.06.014]
46. Nair, R., S.H. Varghese, B.G. Nair, T. Maekawa, Y. Yoshida, and D.S. Kumar. 2010. Nanoparticulate material delivery to plants. J. Plant Sci. 179(3): 154-163. [DOI:10.1016/j.plantsci.2010.04.012]
47. Sharma K.S. Dubey. 2011.Biotechnology and conservation of medicinal plants. J. Expl Sci 2:60-61
48. Soltani Howyzeh, M., S.A. Sadat Noori, J. V., Shariati, and M. Niazian. 2018. Essential oil chemotype of Iranian Ajowan (Trachyspermum ammi L.). J. Essen. Oil Bear. Plants. 21(1): 273-276. [DOI:10.1080/0972060X.2018.1433074]
49. Valizadeh, M., A., Safarnezhad, Nematzadeh, G.A., Kazemi, T.S. and H. Hamidi. 2008. Regeneration of Plantlets from Fragmented Embryo Explant of Parsi Zira (Bunium persicum Boiss). J..Seed Plant. 24(3): 389-397. (In Persion)
50. Wang, C., S.S. Li, and G.Z. Han. 2016. Commentary: plant auxin biosynthesis did not originate in charophytes. Front. J. Plant Sci. 7:158-165 [DOI:10.3389/fpls.2016.00158]
51. Yang, F., F. Hong, W. You, C. Liu, F. Gao, C. Wu, and P. Yang. 2006. Influence of nano-anatase TiO 2 on the nitrogen metabolism of growing spinach. J. Biol. Trace Elem. Res. 110(2): 179-190. [DOI:10.1385/BTER:110:2:179]
52. Zare, E., S. Pourseyedi. M. Khatami. and E. Darezereshki. 2017. Simple biosynthesis of zinc oxide nanoparticles using nature's source, and it's in vitro bio-activity. J. Mol. Struct. 1146: 96-103. [DOI:10.1016/j.molstruc.2017.05.118]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Moradi N, Sadat Noori S A, Dumani Y, Amini F. Assessment of the Effect of Optical Spectra (LED) and TiO2 and ZnO Nanoparticles on Vegetative Embryogenesis and Regeneration of Some Ecotypes in Ajowan (Trachyspermum ammi L.). IJHST 2022; 23 (3) :447-462
URL: http://journal-irshs.ir/article-1-521-fa.html

مرادی نرگس، سادات نوری سید احمد، دومانی یاسین، امینی فاطمه. ارزیابی تاثیر طیف‌های نوری (LED) و نانو ذرات TiO2 و ZnO بر رویان‌‌‌زایی رویشی و باززایی برخی اکوتیپ‌‌های زنیان. مجله علوم و فنون باغبانی ایران. 1401; 23 (3) :447-462

URL: http://journal-irshs.ir/article-1-521-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
جلد 23، شماره 3 - ( پاییز 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علوم و فنون باغبانی ایران Iranian Journal of Horticultural Science and Technology
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 45 queries by YEKTAWEB 4645